- Гематология
- Анализаторы гематологические
- Анализаторы гемоглобина
- Анализаторы гликированного и гликозилированного гемоглобина
- Анализаторы иммуногематологические
- Анализаторы КЩС газов и электролитов крови
- Анализаторы СОЭ
- Аппараты подготовки гематологических мазков
- Проточная цитометрия
- Счетчики форменных элементов
- Тромбоэластографы
Лабораторная диагностика дифтерийной инфекции (Методические указания МУК 4.2.3065-13)
Цель бактериологического исследования
Выявление возбудителя дифтерии с помощью минимального количества диагностических тестов.
Необходимые и специфичные тесты для получения достоверного ответа в максимально сжатые сроки
- Не менее трех суток – отрицательный ответ.
- Трех-четырех суток – ответ о выделении токсигенных коринебактерий дифтерии (возбудителя дифтерии).
- Четырех-пяти суток – ответ о выделении нетоксигенных коринебактерий дифтерии или других представителей этого рода.
Возбудитель дифтерии
Corynebacterium diphtheriae, продуцирующие дифтерийный токсин (экзотоксин).
Источники инфекции
Больной или бактерионоситель токсигенных C. diphtheriae.
Кровяные теллуритовые среды
- Лучшие селективные дифференциально-диагностические среды (КТА, Клауберг II).
- Обеспечивают рост колоний через 24 ч, что сокращает сроки выдачи окончательного бактериологического ответа на одни сутки.
- Просты в приготовлении: основа – коммерческий сухой питательный агар (СПА), добавки – кровь или любые гемолизированные кровяные добавки.
Окрашивание мазков
- Окрашивание по Лёффлеру (щелочной метиленовый синий) или другими синими красителями.
- Окраску по Граму не применяют, так как клетки грамположительных C. diphtheriae легко обесцвечиваются спиртом и могут выглядеть грамотрицательными (розовый оттенок).
Способы постановки пробы на токсигенность
- Модифицированная проба Элека с бумажными полосками, утвержденная в 1961 г.
- Проба Фельдмана Ю.Г. и соавторов с бумажными дисками, утвержденная в 1988 г.
Использование антитоксина
Только антитоксин – противодифтерийные антитоксические антитела, очищенные методом специфической сорбции, для избежания неспецифических линий преципитации микробного происхождения.
Обязательные биохимические тесты
- На цистиназу
- На уреазу
- На расщепление глюкозы, сахарозы и крахмала
- Тест на нитраты проводят только при положительной уреазной реакции.
Требования к взятию и транспортированию материала
- Использование коммерческих стерильных сухих ватных (или дакроновых) тампонов.
- Материал из ротоглотки и носа берут отдельными тампонами натощак или не ранее чем через 2 ч после еды, до применения полоскания или других видов лечения.
- Тампоны должны иметь форму «капли», а не «веретена».
- Взятие материала осуществляют при хорошем освещении, с использованием шпателя, не касаясь тампоном языка и внутренних поверхностей щек и зубов.
- Материал с ротоглотки берут с миндалин, дужек мягкого неба, небного язычка, при необходимости – с задней стенки глотки.
- При взятии материала из носа используют другой тампон, который вводят глубоко сначала в один, а потом в другой носовой ход.
- При дифтерии других локализаций (глаза, уши, кожа, раны, гениталии) берут материал из ротоглотки и носа.
- При прямой ларингоскопии материал собирают непосредственно из гортани.
- При взятии материала с пораженного участка кожи поверхность протирают стерильной марлевой салфеткой или тампоном, смоченными стерильным физиологическим раствором.
Транспортировка материала
- Доставить тампоны в лабораторию не позднее чем через 3 ч после взятия материала.
- В холодное время года для предотвращения замерзания материал доставляют в бактериологическую лабораторию в сумках-термосах.
- При невозможности доставки в установленные сроки материал из ротоглотки и носа засевают «площадкой» с последующим рассевом на одну чашку Петри с питательной средой, разделенной пополам («чашечный метод»).
Посев материала
- При редких локализациях посев материала из каждого пораженного участка осуществляют на отдельную чашку Петри с питательной средой.














